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不同解冻方式对金枪鱼品质特性的影响  PDF

  • 仝潇洋 1,2
  • 张怡 2
  • 刘宝林 1
  • 逄金鑫 2
  • 寇兴然 3
  • 邬松恒 2
  • 邴岐杰 4
  • 乔勇进 2
1. 上海理工大学 健康科学与工程学院,上海 200093; 2. 上海市农业科学院 作物育种栽培研究所,上海 201403; 3. 上海应用技术大学 香料香精技术与工程学院,上海 201418; 4. 上海曼透鲔业国际贸易有限公司,上海 200433

中图分类号: TS 254.4

最近更新:2024-09-04

DOI: 10.12024/jsou.20231104344

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摘要

金枪鱼富含蛋白质和多不饱和脂肪酸,是主要的深海商品食用鱼。为减少其营养流失和品质下降,捕捞后需立即进行冷冻保存。因此,为了提高金枪鱼的食用品质,冷冻金枪鱼的解冻工艺成为影响金枪鱼产业发展的关键技术。为探究不同解冻方式对金枪鱼品质的影响,从持水性、色泽、质地、抗氧化性、新鲜度和微观结构等方面对3种解冻方式(盐水解冻,ST;冷藏解冻,RT;低压静电场解冻,LV)进行了比较研究。结果表明,解冻方式对金枪鱼品质有显著影响。ST组可更好地保持金枪鱼肉的持水性(79.878%±3.913%)和新鲜度[(8.750±0.495) mg/100 g]。但ST组具有较高的氧化水平和微观结构损伤。RT组在色泽、质地和氧化抑制作用方面显著优于ST组;但RT组解冻损失率高、新鲜度差。相比于其他两种解冻方式,LV组能够更好地保持金枪鱼肉的色泽、质地、新鲜度[(8.367±0.404) mg/100 g]和持水性(77.827%±0.215%),并可有效抑制金枪鱼解冻过程中的脂质和蛋白质氧化水平,微观结构损伤最小。综上所述,低压静电场解冻可较好的保持金枪鱼肉品质。本文为提升冷冻鱼类产品的解冻品质提供了理论依据和实践探索。

金枪鱼(Thunnus thynnus),隶属鲈形目(Perciformes)鲭科(Scombrida),是一种深海商品食用鱼,其富含蛋白质和多不饱和脂肪酸,具有极高的经济价值和营养价

1。在远洋捕捞过程中,由于捕鱼船的捕捞周期较长,因此被捕捞的金枪鱼需要进行快速冷冻处理,以此延长金枪鱼的货架2。这也使得解冻成为金枪鱼加工前的必要工序,并显著影响金枪鱼肉的品3

目前常用的解冻方式有流水解冻、空气解冻和盐水解冻(Salt water thawing,ST)等。但上述解冻技术存在着解冻后产品品质劣变程度

4-5、耗能6或解冻速度7等缺点。其中,流水解冻不利于肌原纤维蛋白凝胶的形成,未能有效改善解冻后肉品的品8。也有研究指出,高于4%质量分数的氯化钠溶液会导致肌原纤维蛋白快速失水以及鱼肉咀嚼性下9。因此,亟待探寻一种可改善金枪鱼肉解冻品质,降低蛋白质和脂质氧化程度的解冻技术,以期提高金枪鱼产业的经济效益。低压静电场(Low-voltage electrostatic field,LVEF)作为一种新型解冻技术,具有改善肉类解冻品质的效果。在辅助肉及肉制品解冻领域具有较高的研究热10。在解冻鸡胸肉的过程中,LVEF表现出了抑制冰晶损伤,维持肌纤维完整性的效11。然而,目前关于低压静电场辅助解冻金枪鱼的应用及其对解冻过程中金枪鱼品质和理化指标的影响鲜有报道。因此本研究将对比盐水解冻、冷藏解冻以及低压静电场辅助解冻技术对金枪鱼品质劣变的抑制效果,以此寻找最佳解冻工艺,提高其食用品质。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

冷冻金枪鱼由上海鲔业有限公司提供,鱼体质量为28 kg。金枪鱼在(-70±1)℃下经过5 d运输至(-28±1)℃冷库冻藏,实验前金枪鱼已在冷库中存放12 h。

磷酸二氢钠、磷酸氢二钠、25% 戊二醛水溶液、无水乙醇、碳酸钾、硼酸、盐酸、甘油、阿拉伯胶(分析纯),购买于国药集团化学试剂有限公司;总巯基含量检测试剂盒、蛋白质羰基含量检测试剂盒,购买于北京索莱宝科技有限公司;丙二醛(Malondialdehyde,MDA)测试盒,购买于南京建成生物工程研究所。

1.2 仪器与设备

TA.XT plus质构仪,加拿大PIERCE公司;F6/10 Tissuelyser匀浆机,上海净信实业发展有限公司;CM-5色差仪,柯盛行(杭州)仪器有限公司;MQX200酶标仪,美国百特仪器有限公司;DENBA-08R低压静电场,DENBA JAPAN株式会社;CR21N高速冷冻离心机,日本HITACHI公司;MA100快速水分分析仪,德国SARTORIUS公司。

1.3 原料处理

从冷冻金枪鱼背部切分15块厚度为(3.5±0.5)cm的长方体鱼块,每块质量为(250±30)g,随机分为3组。按表1中列举的不同解冻方式对冷冻金枪鱼肉进行分类解冻,每个解冻方式设3组平行,解冻示意图见图1。采用曹珠

4的方法并进行了微小的修改,采用温湿度记录仪(RC-4HC,江苏精创电器股份有限公司)测定金枪鱼块的中心温度,将1 ℃设置为金枪鱼块的解冻完成温度,解冻完成后金枪鱼肉外观图见图2

表1  金枪鱼的解冻方法
Tab.1  Thawing methods for tuna
解冻方式Thawing method简称Abbreviation操作方法Operation method
盐水解冻Salt water thawing ST 样品置于40 g/L氯化钠溶液中进行解冻,水温(20±1)℃
冷藏解冻Refrigeration thawing RT 样品置于保鲜盒中,放在(4±1)℃下进行解冻

低压静电场辅助解冻

Low-voltage electrostatic field assisted thawing

LV 样品置于1 000 mV/m低压静电场中解冻,环境温度(4±1)℃

图1  金枪鱼解冻示意图

Fig.1  Schematic diagram of tuna thawing

图2  不同解冻方式解冻后金枪鱼外观

Fig.2  Appearance of tuna after thawing by different thawing methods

1.4 指标测定

1.4.1 解冻损失率

参考ZHANG

12的方法,并进行轻微改动。金枪鱼解冻前后的质量分别记为m0m1。金枪鱼的解冻损失计算公式:

XT=m0 - m1/m0×100% (1)

式中:XT为金枪鱼的解冻损失率,%;m0为金枪鱼解冻前的质量,g;m1为金枪鱼解冻后的质量,g。

1.4.2 离心损失率

称取1 g金枪鱼肉(不含有结缔组织)于10 mL离心管中(m2)。在4 ℃,10 000×g条件下离心10 min。用滤纸拭干离心出的水分后称取质量(m3)。离心损失率计算公式:

XC=m2 - m3/m2×100% (2)

式中:XC为金枪鱼的离心损失率,%;m2为金枪鱼离心前的质量,g;m3为金枪鱼离心后的质量,g。

1.4.3 持水性

参考JIANG

13的方法。测定离心前后的含水量,评估离心前每100 g金枪鱼肉中水分保留的百分比。ω0ω1分别为离心前和离心后的含水量,CL为离心损失率。水分含量的测定:称取0.5 g金枪鱼肉(精确至0.000 1 g)并尽可能切碎,厚度不超过5 mm,使用MA100快速水分分析仪测定。持水性计算公式:

XWHC=ω1×100% - XC/ω0 (3)

式中:XWHC为金枪鱼持水性,%;ω0为离心前金枪鱼的含水量;ω1为离心后金枪鱼的含水量,XC为离心损失率。

1.4.4 色泽

参考CHANG

14的方法并稍有改动。用CM-5比色仪测量金枪鱼肉表面的色泽。测量参数:8 mm测量孔径,SCE,光源D65,标准观察者10°,黑板归零,白板校正(L*=96.45,a*=-0.14,b*=-0.28)。

1.4.5 肌红蛋白含量

根据HU

15的方法测定肌红蛋白含量,即测定脱氧肌红蛋白(DMb)、氧肌红蛋白(OMb)和高铁肌红蛋白(MMb)的含量。样品取自金枪鱼肉表面,样品(1 g)加入5 mL磷酸盐缓冲液(0.04 mol/L,pH 6.8)在冰浴中匀浆。4 ℃静置1 h后,4 ℃,8 000×g离心30 min,然后过滤取上清液。随后,分别在503 nm、525 nm、557 nm和582 nm测定滤液的吸光度。肌红蛋白的相对量计算公式:

XDMb= - 0.543R1 + 1.594R2 + 0.550R3 - 1.329×100% (4)
XOMb=0.722R1 - 1.432R2 - 1.659R3 + 2.599×100% (5)
XMMb= - 0.159R1 - 0.085R2 + 1.262R3 - 0.52×100% (6)

式中:XDMb为脱氧肌红蛋白相对含量;XOMb为氧合肌红蛋白相对含量;XMMb为高铁肌红蛋白相对含量;R1为A582/A525R2为A557/A525R3为A503/A525

1.4.6 质构特性

将金枪鱼肉切成30 mm×30 mm×20 mm的规格,压缩力以垂直于肌纤维方向加载两次。使用TA.XT-plus质构仪测定,加装P/36R型号探头,参数设置如表2所示。

表2  TPA参数设置
Tab.2  TPA parameter settings
项目Item设定值Set value
测前速率Pre-test speed 5.00 mm/s
测中速率Test speed 1.00 mm/s
测后速率Post-test speed 5.00 mm/s
压缩变形率Compression set 50.00%
触发力Trigger force 5.00 g

探头2次测定间隔时间

Probe 2 measurement intervals

5.00 s
触发类型Trigger type 自动

1.4.7 MDA含量

根据王雪松

3的方法提取金枪鱼肉中的MDA。取解冻后切碎的金枪鱼肉1 g,加入9 mL 0.9%的氯化钠溶液,冰浴匀浆,以5 000 r/min室温离心10 min。取上清液,采用MDA测试盒,并根据使用说明书在532 nm处测定吸光度,计算鱼肉中MDA的含量。

1.4.8 巯基含量

使用总巯基含量检测试剂盒,并根据使用说明书在412 nm处测定吸光度,计算金枪鱼肉中巯基的含量。

1.4.9 羰基含量

使用蛋白质羰基含量检测试剂盒,并根据使用说明书在370 nm处测定吸光度,计算金枪鱼肉中羰基的含量。

1.4.10 TVB-N值

根据《食品安全国家标准食品中挥发性盐基氮的测定》(GB 5009.228—2016)测定不同解冻方式对金枪鱼肉中TVB-N含量的影响。

1.4.11 微观结构

根据凌胜男

16的方法测定并做出轻微改动。肌肉组织样本(0.5 cm×0.5 cm×0.25 cm)在25 mL/L戊二醛(使用0.2 mol/L pH 7.2的磷酸盐缓冲液稀释)中浸泡2 h。蒸馏水冲洗1 h后,在连续浓度为50%、70%、80%、90%和100%的乙醇中各脱水1 h。对干燥后的样品进行镀金,通过扫描电子显微镜[TM4000Plus Tabletop Microscope,日立高新技术(上海)国际贸易有限公司]观察肌肉组织纤维的纵截面。

1.5 数据处理与分析

实验设置3组平行,结果以平均值±标准差表示。采用SPSS 20软件中单因素方差分析对试验数据进行Duncan's方差分析,显著水平为0.05,采用Origin 2018软件进行绘图。

2 结果

2.1 不同解冻方式对金枪鱼解冻时间和持水性的影响

常温盐水解冻是目前常见的解冻方法之

417,以该方法作为对照组,可直接反映实验组解冻效果的优劣。由图3可知,ST组的解冻时间最短,其次是LV组,而RT组的解冻时间最长,说明相同温度下LVEF能够缩短金枪鱼的解冻时间。由表3可知,ST组和LV组的解冻损失率无显著差异(P > 0.05),且均显著低于RT组(P<0.05),其中LV组的解冻损失率最低,为5.803%±0.339%。ST组和LV组的离心损失率显著低于RT组(P<0.05),其中ST组离心损失率最低,为19.015%± 1.761%。ST组的持水性最高,为79.878%± 3.913%,其次是LV组,且两组均显著高于RT组(P<0.05)。同时,ST组的持水性与LV组间无显著差异(P > 0.05)。这些结果表明,ST组和LV组能够更有效地保留金枪鱼的水分,并缩短金枪鱼的解冻时间。

图3  不同解冻方式解冻金枪鱼的解冻曲线

Fig.3  Thawing curves of tuna thawed by different thawing methods

表3  解冻方式对金枪鱼持水性、色泽和质地的影响
Tab.3  Effect of thawing method on water-holding capacity, color and texture of tuna
指标ItemSTRTLV
解冻损失率Thawing loss/% 6.038±0.152a 7.446±0.628b 5.803±0.339a
离心损失率Centrifugal loss/% 19.015±1.761a 24.935±1.209b 20.311±0.778a
持水性Water-holding capacity/% 79.878±3.913a 70.981±0.410b 77.827±0.215a
亮度值L* 29.945±1.775a 34.177±1.229b 30.463±1.360a
红度值a* 0.301±0.014a 7.835±0.007b 9.335±0.375c
黄度值b* 0.810±0.113a 9.573±0.368c 6.850±0.354b
硬度 Hardness/g 2 408.728±181.163a 3 417.926±1425.782b 6 031.194±940.023c
弹性 Springiness 0.426±0.012a 0.751±0.082b 0.696±0.015b
凝聚性 Cohesiveness 0.175±0.003a 0.372±0.089b 0.440±0.061b
咀嚼性 Chewiness/mJ 176.692±11.554a 1 024.49±113.291b 1 494.199±94.687c

注:  同行不同小写字母表示显著性差异(P<0.05)。

Notes:   Different lowercase letters indicate significant differences (P<0.05).

2.2 不同解冻方式对金枪鱼色泽和肌红蛋白含量的影响

表3可以发现,RT组的L*值显著高于ST组和LV组(P<0.05),且ST组与LV组间的L*值无显著差异(P > 0.05)。有研究指出,解冻样品表面形成的水膜能提高样品的L*值,这解释了RT组中解冻损失率与L*值的变化关

15。金枪鱼肉红度值较高,表明其氧化程度越低。从表3可知,LV组的a*值显著高于ST组和RT组(P<0.05),且ST的a*值最低(0.301±0.014)与RT组存在显著差异(P<0.05)。b*值的增加与脂质的氧化程度呈正相18,RT组的b*值最高,其次是LV组,而ST组的b*值最小,且3组间存在显著差异(P<0.05)。氧合肌红蛋白比例的下降会导致a*值的下19图4显示了不同解冻方式对金枪鱼中肌红蛋白比例的影响。结果显示,ST组的氧合肌红蛋白比例显著低于其他解冻组,且ST组的高铁肌红蛋白比例显著高于其他解冻组(P<0.05)。同时发现,RT组和LV组之间的氧合肌红蛋白比例以及高铁肌红蛋白比例无显著差异(P > 0.05)。因此,LV组能够有效地保护金枪鱼的色泽。

图4  不同解冻方式对金枪鱼肉中肌红蛋白形态比例的影响

Fig.4  Effect of different thawing methods on the proportion of myoglobin morphology of tuna

不同小写字母表示显著性差异(P<0.05)。

Different lowercase letters indicate significant differences (P<0.05).

2.3 不同解冻方式对金枪鱼质构的影响

表3可以发现,LV组、RT组和ST组间的硬度和咀嚼性存在显著差异(P<0.05)。其中LV组的硬度和咀嚼性最高,ST组的硬度和咀嚼性最低。这表明硬度的变化与咀嚼性密切相

20。在弹性和凝聚性方面,ST组的弹性显著低于其他处理组(P<0.05),且LV组与RT组间并无显著性差异(P > 0.05)。因此,LV组有利于维持解冻金枪鱼的质地品质。

2.4 不同解冻方式对脂质氧化的影响

MDA是脂质氧化的最终产物,同时也是分析鱼肉脂质氧化的关键指标。图5结果显示了不同解冻方式对金枪鱼肉中MDA含量的影响。ST组的MDA含量[(34.546±4.904) nmol/g]显著高于其他解冻组(P<0.05),表明ST组具有最高的脂氧化程度。其次是RT组[(21.567±1.271) nmol/g]和LV组[(13.442±0.392) nmol/g],且两组间存在显著性差异(P<0.05)。因此,LV组能够有效抑制解冻过程中金枪鱼肉脂质的氧化。

图5  不同解冻方式对金枪鱼肉中MDA的影响

Fig.5  Effect of different thawing methods on the MDA of tuna

不同小写字母表示显著性差异(P<0.05)。

Different lowercase letters indicate significant differences (P<0.05).

2.5 不同解冻方式对蛋白质氧化的影响

图6显示了金枪鱼解冻过程中羰基和巯基的含量变化。ST组的蛋白质羰基含量[(0.025±0.001) μmol/g]显著高于其他解冻组(P<0.05),表明ST组具有更高的蛋白氧化程

21。这与ST组中高铁肌红蛋白比例的变化相吻合。RT组[(0.021±0.001) μmol/g]显著低于LV组[(0.016±0.001) μmol/g]的羰基含量(P<0.05),这与低压静电场抑制蛋白质的氧化速率有关。巯基生成二硫键促使蛋白质交22图6结果显示,LV组[(6.170±0.531) μmol/g]的总巯基含量显著高于其他解冻组(P<0.05),表明其具有更低的蛋白质氧化程度。其次是RT组[(5.355±0.057) μmol/g]和ST组[(4.283±0.242) μmol/g],且组间表现出显著性差异(P<0.05)。因此,低压静电场辅助解冻能够有效抑制金枪鱼肉中蛋白质的氧化。

图6  不同解冻方式对金枪鱼中蛋白质氧化的影响

Fig.6  Effect of different thawing methods on the protein oxidation of tuna

不同小写字母表示显著性差异(P<0.05)。

Different lowercase letters indicate significant differences (P<0.05).

2.6 不同解冻方式对金枪鱼TVB-N的影响

TVB-N值是反映水产品新鲜度的重要指标之一,与含氮化合物的降解程度密切相

23。从图7可知,ST组和LV组的TVB-N值并无显著性差异(P > 0.05),且显著低于RT组[(11.900±0.700) mg/100 g](P<0.05),其中LV组的TVB-N值最低[(8.367±0.404)mg/100 g]。这表明LV组能够抑制含氮化合物的降解。

图7  不同解冻方式对金枪鱼TVB-N值的影响

Fig.7  Effect of different thawing methods on the TVB-N values of tuna

不同小写字母表示显著性差异(P<0.05)。

Different lowercase letters indicate significant differences (P<0.05).

2.7 不同解冻方式对金枪鱼肉微观结构的影响

图8结果显示,ST组肌肉微观结构中存在大量孔洞,肌肉损伤较大。RT组肌肉微观结构完整,但纤维束间存在大量孔隙,纤维束上存在损伤。然而,LV组的肌肉微观结构最佳,纤维束损伤较小,纤维束间孔隙少。

图8  不同解冻方式对金枪鱼肌肉组织微观结构(纵切面)的影响(400×)

Fig.8  Effect of different thawing methods on the microstructure (longitudinal section) of tuna muscle tissue (400×)

3 讨论

金枪鱼具有极高的营养价值和经济价值,因此,前人对比分析了诸多能够维持金枪鱼品质的解冻技术。例如,曹珠

4报道超声解冻有利于减少冷冻金枪鱼的解冻时间,但其产生的空化效应和微射流可加剧蛋白质的氧化,影响色泽和质4。微波解冻虽然缩短了金枪鱼的解冻时间,但鱼肉出现了受热不均匀的情24。低压静电场作为新型物理场辅助解冻技术而备受关注,在解冻牛肉、羊肉、猪肉等肉类中表现出缩短解冻时间、抑制蛋白氧化和提高肉质弹性等的效25-27。因此,低压静电场可能改善金枪鱼的解冻品质。

低压静电场能够增加肉中离子键和氢键的数目,这加强了冰晶融化后蛋白质与水分子间的相互作

28。同时,低压静电场可能改变生物大分子的表面电荷,抑制生化反应速29。这些使得LV组具有更高的持水性和更低的脂质与蛋白质氧化程度。此外,HU15提出静电场可以促进因冰晶而变性的肌原纤维蛋白复性。这保持了LV组中较高的硬度、弹性和咀嚼性以及良好的肌肉微观结构。此外,与去离子水相比,盐溶液具有更高的导热系数,能够明显缩短解冻时间,减小冰晶损30。余文晖31分析了盐溶液对金枪鱼解冻品质的影响,表明3%的NaCl能有效提高金枪鱼的持水性(76.14%±7.37%),与本研究4%(40g/L)的NaCl溶液的持水性(79.878%± 3.913%)类似。然而,本研究发现,ST组在质地、脂质和蛋白质的氧化程度以及微观结构均劣于RT组和LV组,可能是盐溶液的质量分数和解冻温度较高的原因。

9证实,冷藏环境能够降低肉中蛋白质与脂质的氧化速率,保持了鸭腿肉的解冻品质。本研究在冷藏的基础上施加低压静电场,使氧化酶出现诱导偶极矩,改变了酶的构象,进一步降低了蛋白质和脂质的氧化程度,提高了金枪鱼的解冻品29

与超声解冻和微波解冻类似,低压静电场辅助解冻技术也存在弊端。首先,当肉类处于较高的静电场环境时,正负离子的动能增加,可能成为部分生化反应的“催化剂”,降低产品品质。其次,静电场强度的提高可能更彻底地改变酶类的构象,使酶或蛋白质出现不可逆变性,进而影响产品的色泽和持水性。因此,未来需要进一步明确静电场强度的“催化”阈值,或探寻与其他解冻技术相联合,以期能更好的保持肉类的解冻品质。

4 结论

本研究比较了3种不同解冻方式(ST、RT、LV)对冷冻金枪鱼的解冻效果,结果表明,解冻方式对金枪鱼品质有显著影响。盐水解冻能够改善金枪鱼的持水性和新鲜度,并有效缩短了解冻时间。较低的解冻温度有利于保持金枪鱼肉的色泽、质地、微观结构。低压静电场辅助解冻金枪鱼能够更有效地缩短解冻时间并维持鱼肉品质,降低解冻过程中的氧化作用,使得解冻后金枪鱼具有最低的脂质和蛋白质氧化程度,其中MDA和羰基浓度分别为(13.442±0.392) nmol/g 肉和(0.016±0.001) μmol/g 肉,TVB-N值最低,为(8.367±0.404)mg/100 g肉,肌纤维微观损伤轻微,保持了良好的质地品质和持水性(77.827%± 0.215%)。

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